比买冰墩墩更难的是IPS细胞基因编辑？

诱导多能干细胞（induced pluripotent stem cells，IPS）与胚胎干细胞（Embryonic stem cells，ES）的功能相似，是由终末分化的细胞经诱导重编程后得到的具有多能干性的细胞。其分化能力强，且与原细胞遗传背景一致，在特定的条件下，IPS细胞能再分化成特定的细胞类型或组织。与原代提取的干细胞相比，IPS细胞具有无道德伦理争议，来源广泛，避免了免疫排斥反应的优点。近年来，CRISPR基因编辑在IPS细胞中的应用越来越受到关注，并在疾病模型的建立与机制研究、细胞治疗、药物的发现与评价等方面有着巨大的潜在应用价值，为整个干细胞生物学领域和临床再生医学提供了新的研究思路。下面给大家介绍IPS的背景知识和联合基因编辑后的应用。

IPS细胞的诱导原理是将外源因子递送至终末分化的细胞中，激活多能性基因的表达，使终末分化的细胞重编程成多能干细胞，即IPS细胞。这些外源因子通常有Oct4、Sox2、Klf4等。

通过逆转录病毒或慢病毒系统，使外源因子的基因序列整合至宿主细胞（如成纤维细胞）中，长期稳定表达外源因子，可以启动终末分化细胞的重编程。这种方法具有较高的诱导效率，但是得到的IPS细胞具有一定的致瘤性。因此为了避免这种风险，也有使用腺病毒或者质粒法等整合至基因组概率低的方法，或者将外源因子直接添加至培养基中使细胞吸收外源因子，但是这些方法也存在一个很大的问题：诱导效率极低。

为了提高诱导效率，一些研究者在诱导体系中添加一些小分子药物或调整培养条件。例如，通过添加小分子药物影响细胞基因组的甲基化程度或特定的信号通路等，从而提高重编程的效率。所以在诱导IPS细胞时，可适当添加小分子药物，提高诱导效率。

另外，受体细胞的类型、状态和传代代数等因素对诱导成功率也有很大的影响。总体来讲，分化程度高的细胞类型的诱导成功率较低。这可能与受体细胞的甲基化修饰和乙酰化修饰等表观遗传修饰有关，使得诱导的条件也不尽相同。所以选择合适的受体细胞进行诱导也很重要。现今常用的受体细胞有原代成纤维细胞，这是由于取材方便和培养简便。

受体细胞经诱导后，需要经过筛选与鉴定，来获得目的IPS细胞。以相应物种的ES细胞作为对照，从分子和细胞水平进行检测，判断IPS细胞诱导的成功与否。

在分子水平可以检测内源的干性标记基因的表达水平，如：Oct4、Sox2、Nanog等。虽然这些基因的表达水平在不同物种间存在差异，但一般情况下表达都较高。也可以通过免疫荧光染色的方法检测这些标记基因，如果具有阳性信号，也表明具有多能干性。同时还能检测内源干性标记启动子的甲基化程度。此外还需检测端粒酶的活性，来确定IPS细胞的永生化能力。

在细胞层面，能通过观察细胞的形态进行判别：IPS细胞的形态与ES细胞相似，具有生长速度快、集群生长、核质比高、能长期传代和AP染色呈阳性等特点。此外需要检测分化能力和核型，这是由于外源基因整合具有随机性，使诱导得到的 IPS 细胞会有较高比例的核型异常。

CRISPR基因编辑技术可有效且精准地对目的基因进行敲除、点突变和敲入。近年来，CRISPR和IPS细胞分别在基因研究和疾病治疗等方面有着巨大的应用潜力。那么当CRISPR应用于IPS细胞时，就会摩擦出巨大的火花。

通过基因编辑的手段，纠正患者来源的IPS细胞的致病基因，并将纠正后的IPS细胞分化成特定的细胞、组织和器官，移植回患者体内用于治疗，这是IPS细胞与基因编辑联合应用最理想的做法。例如将皮肤或血细胞诱导成IPS细胞，再通过用CRISPR/Cas技术将CISH基因敲除，获得IPSC-CISH^-/-细胞，再分化成IPSC-CISH^-/--NK细胞（图1）。研究结果表明，在白血病异种移植模型中，IPSC-CISH^-/--NK细胞对肿瘤生长具有更强的抑制能力，并且IPSC-CISH^-/--NK细胞在体内的持久性也显著增加。

图1. 在人类IPSC中构建CISH^-/-IPSC-NK细胞^[1]。

基因编辑过后的IPS细胞能被诱导成各种细胞、组织和器官，可以构建各种疾病模型，用于基因功能研究、疾病机制探索和药物筛选等。比如Kung等在人类iPSC细胞中敲除了miR-26b（图2），以探索miR-26b在发育和疾病中的作用。该miR-26b敲除的IPS细胞表现出正常的核型，表达多能性标记并分化为三个胚层的细胞。这为研究发育提供了一个良好的实验模型，并阐明了IPSC衍生的人类类器官疾病模型中miR-26b下游调控异常的机制。

图2.IPSC细胞中miR-26b的敲除与鉴定^[2]。

赛业生物在细胞基因编辑和干细胞培养有着多年经验，具备在IPS细胞中实现基因编辑的能力。比如通过CRISPR/Cas基因编辑技术，在诱导性多能干细胞IPS中敲除Human TNFAIP8L2基因。通过小片段的敲除方法，在TNFAIP8L2的2号外显子设置两条sgRNA，敲除2号外显子300 bp（图3）。经过PCR和测序鉴定，确定获得TNFAIP8L2基因敲除的纯合IPS细胞（图4）。再通过免疫荧光染色，检测NANOG、OCT4和SOX2三个干性标记基因，均能检测出阳性信号（图5），表明该敲除细胞具有干性。

图3. hTNFAIP8L2的敲除策略。

图4. IPS-hTNFAIP8L2-KO测序检测。

图5. IPS-hTNFAIP8L2-KO干性检测。

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