细胞：质检报告（细菌、真菌、支原体、内毒素、增殖能力、传代能力、流式鉴定、诱导分化能力等）。

培养基：质检报告（细菌、真菌、支原体、内毒素）、注射级别用水、针对特定种属经过血清筛选（干细胞专用胎牛血清）。

细胞：细胞接收之后请检查干冰、细胞冷冻管是否有融化、解冻情形，若有请及时联系我公司售后人员（020-28069038）。如不马上复苏必须立即置于液氮保存，保存时间可长达几年。

培养基：添加物和基础培养基按照标签所示温度分开保存时间为1年；混合之后必须避光保存在2-8℃，推荐在一个月内使用完。同时减少敞开盖子的时间，避免培养基pH变化导致使用效果不佳。 

培养基出现的絮状物是血清融解过程中所释出的蛋白，不同批次的培养基蛋白释出的情况也不同，属于正常现象。

（1）针对特定种属细胞优化的培养体系；

（2）多个方向诱导：成骨、成脂、成软骨、成肝、成神经元、成星形胶质、EB形成等；

（3）性能稳定，诱导分化效果好。

（1）诱导之前铺被明胶（0.1%），以防止成骨诱导后期细胞出现成片脱落的现象；       

（２）诱导起始点：细胞汇合度达到65%-70%时开始换用诱导液；

（３）诱导2-3天进行换液时动作需轻柔，液体沿6孔板壁加入，以防止已形成的钙结节被冲刷掉；

（４）固定时间为30min不宜太长，茜素红染色时间控制在5min。 

干细胞在成骨诱导过程中还会继续增殖，当细胞增殖到一定程度的时候，单层贴壁细胞就会变得容易回缩脱落。故成骨诱导前，一般建议使用0.1%明胶对耗材表面进行处理20分钟，吸掉明胶后晾干方可接种细胞。当细胞达到70%汇合时可换成骨诱导液开始进行诱导。

干细胞在诱导前的状态、密度和纯度是诱导成骨成功与否的关键因素。干细胞在诱导前状态不好，密度低于70%，纯度不够都有可能使得诱导不成功。建议使用状态良好的，代次较早的细胞来进行成骨诱导，可适当延长换液时间，3天换液一次改成4天换液一次；或延长诱导时间。

（１）诱导起始点：细胞汇合度达到100%时开始换用诱导液A液；

（２）通常情况下是3天A液，1天B液进行循环诱导。实际操作过程中可以根据细胞状态适当增加或者缩短A液诱导的时间；

（３）换液动作需轻柔， 最后染色时油红O需要按照3:2（油红O：蒸馏水）进行稀释并用中性滤纸过滤之后方可使用。

（１）可能是IBMX加入前未充分溶解，加入后即产生沉淀，建议客户在混合前先水浴溶解，待充分溶解后再混合；

（２）培养基出现的沉淀物物可能是血清融解过程中所释出的蛋白，属于正常现象。

（１）染不上色的原因有可能是诱导没有成功，看不到明显的脂滴或者看到的是细胞空泡；若看到明显的脂滴但是染不上色，有可能是染色液失效。

（２）染色很浅的原因有可能是染色液失效或者染色液稀释的比例不对。

一般油红O产品的保存条件是4℃保存，染色前按油红O：1×PBS=3:2的比例稀释使用（染色前现配现用），稀释后会有明显沉淀出现，为了更好的实验效果，需要用滤纸过滤或者用离心的方法去掉沉淀。